4 phi（φ）小体染色的医学检查
phi（φ）小体染色4.1 检查名称
phi（φ）小体染色
4.2 分类
血细胞化学染色
4.3 phi（φ）小体染色的测定原理
由于白血性原、幼粒（单）细胞内某种特异性生物化学的紊乱，致使细胞器内具有氢过氧化物酶（HPO）活性的轴类晶体所排出的球状颗粒发生畸变而分离，或是由于嗜天青颗粒的畸变与肿胀，进而形成φ小体。当采用3,3′-二氨基联苯胺（DAB）/H2O2基质液孵育，及铜盐处理的HPO染色技术，这种HPO阳性的小体即能催化DAB起过氧化反应而被染色。
4.4 试剂
1.25%戊二醛
1% 甲醛
（2）0.05mol/L Tris-HCl缓冲液（pH 7.3～7.6）。
（3）9.0g/L NaCl液。
（4）基质液（须于临用前现配）。
（5）5.0g/L硝酸铜液（用0.05mol/L Tris-HCl pH 7.3～7.6缓冲液配制）。
（6）Wright-Giemsa（复染）液。
（7）改良Papanicolaou（复染）液。
先将苏木精溶于热蒸馏水中，加硫酸钾铝、碘酸钠，搅至全溶，再加水合氯醛和柠檬酸，加热至沸5min，冷却后过滤备用。
②稀盐酸乙醇液：取浓盐酸0.5ml，加70%乙醇至100ml。
③稀碳酸锂溶液：在100ml蒸馏水中，加饱和碳酸锂1至数滴。
④橘黄G6液：以橘黄G60.5g溶于5ml蒸馏水中，再加无水乙醇至100ml。
⑤EA50：可由下列染料配制而成。
A.亮绿液：亮绿（1ight green）0.5g溶于5ml蒸馏水中，再加无水乙醇至100ml。
B.俾斯麦棕液：俾斯麦棕0.5g溶于5ml蒸馏水中，再加无水乙醇至100ml。
C.黄色伊红液：黄色伊红（eosin Y）0.5g溶于5ml蒸馏水中，再加无水乙醇至100ml。
将上述亮绿液27ml、俾斯麦棕液10ml、黄色伊红液45ml混合后加95%乙醇至100ml，再加磷钨酸0.2g和饱和碳酸锂液1滴，混匀。
（注：国外有成品EA50出售）
⑥各种不同浓度乙醇。
4.5 操作方法
（1）DAB染色步骤：干燥骨髓（血）片用戊二醛-甲醛固定液固定2min，生理盐水漂洗后保存于盐水内直至下一步染色止。置基质液中孵育3min，0.05mol/L Tris-HCl（pH7.3～7.6）快速漂洗3次，置5.0g/L，硝酸铜液内2min，生理盐水漂洗，干后直接镜检或经复染后镜检。
（2）改良巴氏复染步骤：
①DAB染色完毕后标本仍保存于生理盐水中，直至下步染色开始。
②在苏木精染液内染1min，取出后水洗。
④稀碳酸锂内1min，水洗2min。
⑤依次在50%、70%、80%、95%乙醇内脱水各0.5min。
⑥在橘黄G6中染1min。
⑦95%乙醇内浸洗2次，每次10s。
⑧在EA50液内染10min。
⑨95%乙醇内浸洗2次，每次3min。
⑩无水乙醇内浸洗2次，每次1min。
4.6 正常值
光镜下φ小体呈棕色细棒状或纺锤形、大圆颗粒形，1条或多条。
4.7 化验结果临床意义
主要见于急性髓性白血病（急粒、急性早幼粒、急性单核细胞白血病）患者的原、幼细胞，以及一些慢粒的“髓性”急变者的原、幼细胞中。
4.8 附注
因此，Φ小体染色具有很强的病理意义，有助于白血病类型的鉴别。