WS/T 632—2018 巴贝虫检测血涂片镜检法

化验及医学检查 卫生标准 中华人民共和国卫生行业标准 血液检查 巴贝虫检测

心气虚,则脉细;肺气虚,则皮寒;肝气虚,则气少;肾气虚,则泄利前后;脾气虚,则饮食不入。
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1 拼音

W S / T 6 3 2 — 2 0 1 8 bā bèi chóng jiǎn cè xiě tú piàn jìng jiǎn fǎ

2 英文参考

Detection of Babesia spp.——Blood smear microscopy examinationmethod

3 基本信息

ICS 11.020

C 61

中华人民共和国卫生行业标准WS/T 632—2018《巴贝虫检测血涂片镜检法》(Detection of Babesia spp.——Blood smear microscopy examinationmethod)由中华人民共和国国家卫生健康委员会于2018年09月26日《关于发布〈土源性线虫病传播控制阻断〉等6项推荐性卫生行业标准的通告》(国卫通〔2018〕21号)发布,自2019年04月01日起实施。

4 发布通知

关于发布《土源性线虫病传播控制阻断》等6项推荐性卫生行业标准的通告

国卫通〔2018〕21号

现发布《土源性线虫病传播控制阻断》等6项推荐性卫生行业标准,编号和名称如下:

WS/T 629—2018 土源性线虫病传播控制阻断

WS/T 630—2018 日本血吸虫抗体检测 间接红细胞凝集试验

WS/T 631—2018 日本血吸虫毛蚴检测 尼龙绢袋集卵孵化

WS/T 632—2018 巴贝虫检测 血涂片镜检法

WS/T 633—2018 巴贝虫检测 虫种核酸鉴定法

WS/T 634—2018 肠道原虫检测 碘液染色涂片法

上述标准自2019年4月1日起施行。

特此通告。

国家卫生健康委员会

2018年9月26日

5 前言

本标准按照 GB/T 1.1—2009 给出的规则起草。

本标准由国家卫生标准委员会寄生虫病标准专业委员会提出。

本标准起草单位:中国疾病预防控制中心寄生虫病预防控制所、第二军医大学、中国农业科学院上海兽医研究所。

本标准起草人:张仪、周晓农、刘琴、陈韶红、朱淮民、周金林。

6 标准正文

巴贝虫检测血涂片镜检法

6.1 1 范围

本标准规定检测巴贝虫血涂片镜检法。

本标准适用于各级疾病预防控制机构和医疗机构对巴贝虫检测

6.2 2 规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

WS/T 569 疟原虫检测 血涂片镜检法

WS/T 564 巴贝虫病诊断

6.3 3 术语和定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

巴贝虫 Babesia spp.

一类寄生于人和脊椎动物红细胞内的原虫,可引起巴贝虫病(Babesiosis)。感染人体巴贝虫有田鼠巴贝虫(Babesia microti)、分歧巴贝虫(B. divergens)、邓肯巴贝虫(B. duncani)和猎户巴贝虫(B. venatorum)等。

3.2

血涂片 blood smears

血液涂制于载玻片上制成的涂片, 分为厚血膜涂片和薄血膜涂片。

6.4 4 仪器和器材

4.1 光学显微镜(100×油镜、10×目镜)

4.2 血涂片染色架

4.3 血涂片干燥

4.4 玻片盒

4.5 染色盘和染色缸

4.6 计数器

6.5 5 试剂和材料

5.1 吉氏染色原液(Giemsa)

5.2 pH7.2 磷酸缓冲液(PBS)

5.3 标准级载玻片(洁净载玻片,或表面带正电荷的粘附玻片)

5.4 甲醇分析纯)

5.5 香柏油或专用浸油 (折射率≥1.5)

5.6 二甲苯 (分析纯)

5.7 甘油

6.6 6 检测步骤

6.6.1 6.1 血涂片的制作

6.6.1.1 6.1.1 采血部位及取血方法

末梢(无名指指尖或耳垂)取血。用75%酒精棉球消毒取血部位,待酒精挥发后,用拇指和食指紧捏耳垂上方或无名指指尖,另一只手手持一次性采血针迅速刺入皮肤,轻轻挤压出血婴儿可从拇趾或足跟扎刺取血。

6.6.1.2 6.1.2 厚血膜制作

取 1张已消毒的载玻片(或粘附玻片)作推片,用推片的一角,取 4µL~5 µL的血量,使血与另1张平置的载玻片(或粘附玻片)中央偏右的位置接触,由里向外旋转,画 2 圈~4 圈,涂成直径0.8cm~1 cm大小圆形厚血膜(见附录A)。

6.6.1.3 6.1.3 薄血膜制作

干棉球抹净推片下角的血渍,用同一张推片中部取约 1 µL~ 1.5µL的血量。将血置于离厚血膜左边缘约 0.3 cm 的位置,推片的边缘紧贴载玻片,上下轻轻移动,使血沿推片的边缘散开至2cm宽,使两张玻片保持 25°~35°角,从右向左迅速推动推片向前,推成舌状薄血膜(见附录A)。

6.6.1.4 6.1.4 编号

血涂片制好后水平放置,充分干燥后,在玻片一侧毛玻璃上或在靠近厚血膜一端边上标注编号和日期。

6.6.2 6.2 固定与溶血

6.6.2.1 6.2.1 薄血膜固定

将薄血膜一端朝下呈 45°角,用一次性吸管吸取甲醇溶液,均匀轻抹于薄血膜表面,避免碰触厚血膜。

6.6.2.2 6.2.2 厚血膜溶血

干燥的厚血膜上滴加蒸馏水数滴,完全覆盖血膜,溶血数分钟,待血膜呈浅灰色,倾去溶血血液

6.6.3 6.3 吉氏染色

6.6.3.1 6.3.1 吉氏染液的配制

常用的吉氏染液工作液包括 2%、3%、10% 三种浓度,分别由吉氏染液原液和pH7.2磷酸缓冲液(PBS)按比例配制,也可购买商品化吉氏染液原液加实验用纯水按比例配制(见附录B)。

6.6.3.2 6.3.2 吉氏染色

染色方法见附录B

6.6.4 6.4 显微镜检查

在染色后的血涂片上加 1滴香柏油或专用浸油,用 100×(倍)油镜、10×(倍)目镜的光学显微镜检查。观察血片路线顺序为薄血膜从尾部舌尖部分开始,厚血膜从上端或下端开始(见附录A)。

6.6.5 6.5 结果判定

6.6.5.1 6.5.1 巴贝虫检测阳性

血膜中发现巴贝虫判定为阳性(参见附录C)。

6.6.5.2 6.5.2 巴贝虫染虫率计数

6.5.2.1 薄血膜的巴贝虫染虫率计数法

显微镜检查薄血膜,计数每个视野中的染虫红细胞红细胞总数2 000 个以上。用下式计算巴贝虫染虫率。

巴贝虫染虫率 = 红细胞总数染虫红细胞× 100% 。

6.5.2.2 厚血膜的巴贝虫染虫率计数法

若染虫率低于 0.1%时,显微镜检查整张厚血膜片,计数整张厚血膜片的巴贝虫虫体数和红细胞总数。用下式计算巴贝虫染虫率。

巴贝虫染虫率 = × 100% (红细胞数男性按500万个/μL血、女性按450万个/μL血计算)。

7 附录A(规范性附录)操作示意图

图.png

图 A.1 厚薄血膜血涂片的制作过程示意图

图.png

图 A.2厚薄血膜血涂片的制作示意图

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图 A.3 厚薄血膜血涂片的读片示意图

8 附录B(规范性附录)试剂配制与血涂片染色、保存方法

8.1 B.1吉氏染色原液配制

将 5.0 g 吉氏粉置于研钵中,加入少量甘油充分研磨,然后边加边磨,至250 mL 甘油加完为止,倒入 500 mL 有塞深色玻璃瓶中。在研钵中加入少量甲醇,洗掉剩余部分,倒入瓶内,再次加甲醇,洗后再倒入瓶中,至 250 mL 甲醇洗净研钵中甘油为止。置室温内,避免阳光直射。塞紧瓶塞,避免蒸发和高湿造成的氧化。每天用力摇动溶液 5 min,3 d 后即可使用,储存时间越久染色效果越佳。根据日常的需求,用干燥吸管吸取少量的染色原液到密闭的分装瓶中(大约 25 mL)。切勿向原液中加入水。

8.2 B.2 pH 7.2 磷酸缓冲液(PBS)的配制

称量 8.0 g NaCl,0.2 g KCl,0.24 g KH2PO4(或者 1.44g Na2HPO4)和1.8 g K2HPO4,溶于800 ml 蒸馏水中,用HCl调节溶液pH值至 7.2,最后加蒸馏水定容至1 L。保存于4℃冰箱中备用。

8.3 B.3吉氏染色工作液配制

B.3.1 2% 吉氏染液工作液的配制

在 98 mL pH 7.2 磷酸缓冲液中加入 2 mL吉氏染色原液并混匀,或98 mL实验用纯水中加入2mL商品吉氏染色原液并混匀。

B.3.2 3%吉氏染液工作液的配制

在 97 mL pH 7.2 磷酸缓冲液中加入 3 mL吉氏染色原液并混匀,或97 mL实验用纯水中加入3mL商品吉氏染液原液并混匀。

B.3.3 10%吉氏染液工作液的配制

在 90 mL pH 7.2 磷酸缓冲液中加入 10 mL吉氏染色原液并混匀,或90 mL实验用纯水中加入10 mL商品吉氏染液原液并混匀。

B.3.4 注意事项

吸取吉氏染色原液时切勿摇晃盛染色原液瓶子。吉氏染色工作液应现用现配,切勿将未用完的吉氏染色工作液倒回原液瓶中。

8.4 B.4 单张血涂片染色法

单张血涂片吉氏染色常用于临床巴贝虫病患者巴贝虫显微镜检测。采用3%吉氏染液染色30min或更长时间。该染色法染色的血涂片可长期保存。也可采用 10%吉氏染液染色8 min~10min,但该染色法染色的血涂片不适合长期保存

8.4.1 B.4.1 3%吉氏染液染色法

B.4.1.1. 把经甲醇固定的薄血膜涂片充分干燥后,血膜面朝上水平放置在染色盘中。

B.4.1.2. 用吸管吸取新配制的 3%吉氏染液 3 mL 左右,滴加于厚、薄血膜上,至染液均匀覆盖血膜,不溢出为止。

B.4.1.3. 静置染色约 30 min。

B.4.1.4. 将染色盘移至冲水池,用缓慢流水沿血涂片上缘冲洗 1 min。B.4.1.5. 将染色后的血涂片血膜面朝下插入血片干燥架,晾干。

8.4.2 B.4.2 10%吉氏染液快速染色法

B.4.2.1. 把经甲醇固定的薄血膜涂片充分干燥后,血膜面朝上水平放置在染色盘上。

B.4.2.2. 用吸管吸取新配制的 10%吉氏染液约 3 mL,滴加于厚、薄血膜上,至染液均匀覆盖血膜,不溢出为止。

B.4.2.3. 静置染色 8 min ~10 min。

B.4.2.4. 将染色盘移至冲水池,沿血涂片上缘用缓慢流水冲洗 1 min。

B.4.2.5. 将染色后的血涂片血膜面朝下插入血片干燥架,晾干。

8.5 B.5 成批血涂片染色

成批血涂片染色常用于人群流行病学调查中的巴贝虫显微镜检测,一般采用2%吉氏染液进行批量血涂片染色。

B.5.1. 将每张血涂片的血膜朝一个方向插入染色缸中,或将每对血涂片的血膜朝外插入染色缸中。

B.5.2. 倒入新配制的 2%吉氏染液浸没厚、薄血膜。

B.5.3. 静置染色 30 min以上。

B.5.4. 向染色缸中注入自来水至溢出,除去染液表面浮渣,将染色缸中残余的染液倾出,加入自来水,缓慢冲洗 2次 ~3 次。

B.5.5. 取出血涂片,血膜面朝下插入血片干燥架,晾干。

8.6 B.6 血涂片保存

吸水纸吸去已检血涂片血膜表面的香柏油,在血膜上滴加 2 滴~3 滴二甲苯,然后吸水纸吸干。置血涂片于玻片盒内,避光、干燥和阴凉保存,以备复核。注意:专用浸油无需用二甲苯清洗,可直接用吸水纸吸干。

9 附录C(资料性附录)形态学

9.1 C.1 形态

巴贝虫红细胞寄生形态具有多样性。常见虫体形态有环形、圆形、杆形、点状、梨形、阿米巴形等。典型形态为梨形,往往在一个红细胞内有多个虫体寄生,以 1个~4个虫体居多,可形成三联体或四联体型,即马尔他十字形,且可为不同发育时期的虫体。经吉氏染色后,胞浆呈蓝色,核呈紫红色。

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图C.1 薄血膜片中田鼠巴贝虫

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图C.2 薄血膜片中分歧巴贝虫(引自Mørch K, Holmaas G, Frolander, et al. Severe humanBabesiadivergens infection in Norway. Int J Infect Dis, 2015, 33:37-38)

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图C.3 薄血膜片中邓肯巴贝虫

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图C.4 薄血膜片中猎户巴贝虫(引自Sun Y, Li SG, Jiang JF, et al. Babesia venatorum Infectionin Child, China. Emerg Infect Dis, 2014, 20(5):896-897)

10 参考文献

[1] 刘恩勇,赵俊龙. 巴贝斯虫病(第一版)[M].武汉:湖北人民出版社2001,21-30.

[2] 吴观陵.人体寄生虫学(第4版)[M].北京:人民卫生出版社,2013,233-237.

[3] WS/T 569 疟原虫检测 血涂片镜检法.

[4] Zhou X, Xia S, Huang JL, et al. Human babesiosis, an emerging tick-borne disease in the People’sRepublic of China[J].Parasites & Vectors 2014, 7:509.

[5] Mørch K, Holmaas G, Frolander, et al. Severe human Babesia divergens infection in Norway[J].Int JInfect Dis, 2015, 33:37-38.

[6] Sun Y, Li SG, Jiang JF, et al. Babesia venatorum Infection in Child, China[J].Emerg Infect Dis, 2014, 20(5):896-897.

[7] WS/T 564 巴贝虫病诊断.

编辑:banlang 审核:sun
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